特別提示:包括水產動物基因組提取試劑盒在內,本公司的所有產品僅可用于科研實驗,嚴禁用于臨床醫(yī)療及其他非科研用途!
產品名稱:水產動物基因組提取試劑盒
英文名稱:Marine Animal DNA Extraction Kit
產品貨號:WE0182
產品規(guī)格:50次
本試劑盒適合于從多種水產動物(如魚類、蝦類、貝類等)組織中提取總DNA。純化過程不需苯酚或lǜ仿等有機溶劑,無需乙醇沉淀。本試劑盒采用優(yōu)化的緩沖體系使裂解液中的DNA特異的結合到硅膠質離心吸附柱上,其他污染物可流過膜,蛋白、PCR和其他酶促反應的抑制劑可通過兩步有效的洗滌步驟被有效去除,zuì后使用低鹽緩沖液或水洗脫,即可獲得高純度DNA。純化得到的DNA可以直接用于酶切、PCR、Real-Time PCR、文庫構建、Southern Blot、分子標記等下游實驗。
試劑盒組成:
組份
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50次
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Buffer GTL
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15ml
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Buffer GL
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15ml
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Buffer GW1(濃縮液)
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13ml
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Buffer GW2(濃縮液)
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15ml
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Buffer GE
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15ml
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蛋白酶K
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25mg
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蛋白酶K 儲存液
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1.25ml
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吸附柱DM及收集管
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50套
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自備試劑:無水乙醇。
實驗前準備及重要注意事項:
1、向蛋白酶K 中加入1.25ml 蛋白酶K 儲存液使其溶解,-20℃保存。配制好的蛋白酶K 勿長時間室溫放置,避免反復凍融,以免影響其活性。
2、樣品應避免反復凍融,否則會導致提取的DNA片段較小且提取量也下降。
3、次使用前應按照試劑瓶標簽說明在Buffer GW1和Buffer GW2中加入無水乙醇。
4、使用前請檢查Buffer GTL和Buffer GL是否出現(xiàn)結晶或者沉淀,如有結晶或者沉淀,Buffer GTL和Buffer GL于56℃水浴重新溶解。
5、如果下游實驗對RNA污染比較敏感,可以在加入Buffer GTL后加入4μl DNase-Free的RNase A(100 mg/ml),RNase A本試劑盒并未提供,如需要可單獨向本公司訂購,貨號:WE0225S。
不同水產動物組織提取得率:
樣本
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建議孵育時間
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DNA得率
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貝類組織
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0.5 h
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12-20μg
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蝦組織
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1 h
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8-14μg
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魚組織
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1 h
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15-40μg
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操作步驟:
1、取不超過30 mg組織材料,液氮充分研磨后,放入離心管(自備)中,加入200μl Buffer GTL,渦旋振蕩15秒。
注意:
1)根據(jù)提取的組織不同,起始量也有不同,腮的細胞量較大,一般建議提取量不超過20 mg。
2)如需去除RNA,可在上述步驟完成后,加入4μl 100 mg/ml 的RNase A溶液(貨號:WE0225S),震蕩混勻,室溫放置5-10分鐘。
2、加入20μl 蛋白酶K ,渦旋混勻,簡短離心,使管壁上的溶液收集到管底。56℃孵育,直至組織完全溶解,短暫離心,使管壁上的溶液收集到管底。
注意:不同組織裂解時間不同,通常需0.5-2小時即可完成。對于難裂解組織可以適當延長孵育時間。
3、加入200μl Buffer GL,充分顛倒混勻,70℃孵育10分鐘,短暫離心,使管壁上的溶液收集到管底。
注意:加入Buffer GL時可能會產生白色沉淀,一般70℃放置時會消失,不會影響后續(xù)實驗。如溶液未變清亮,說明細胞裂解不徹底,可能導致提取DNA量少和提取出的DNA不純。
4、加入200μl無水乙醇,充分顛倒混勻,此時可能出現(xiàn)絮狀沉淀,短暫離心,使管壁上的溶液收集到管底。
5、將步驟4所得到的溶液全部加入到已裝入收集管的吸附柱DM中,若一次不能加完溶液,可分多次轉入。12000rpm(~~13400×g)離心1分鐘,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中。
6、向吸附柱中加入500μl Buffer GW1(使用前檢查是否已加入無水乙醇),12000rpm離心1分鐘,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱放回收集管中。
7、向吸附柱中加入500μl Buffer GW2(使用前檢查是否已加入無水乙醇),12000rpm離心1分鐘,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱放回收集管中。
注意:如需進一步提高DNA純度,可重復步驟7。
8、12000rpm離心2分鐘,倒掉收集管中的廢液。將吸附柱置于室溫數(shù)分鐘,以徹底晾干。
注意:這一步目的是將吸附柱中殘余乙醇去除,乙醇殘留會影響后續(xù)酶促反應(酶切、PCR等)。
9、將吸附柱置于一個新的離心管中,向吸附柱中間部位懸空加入50-200μl Buffer GE,室溫放置2-5分鐘,12000rpm離心1分鐘,收集DNA溶液,-20℃保存DNA。
注意:
1)如果下游實驗對pH值或EDTA敏感,可以用滅菌水洗脫。洗脫液的pH值對洗脫效率有很大影響,若用水做洗脫液應保證其pH值在7.0-8.5(可以用NaOH將水的pH值調到此范圍),pH值低于7.0時洗脫效率不高。
2)離心之前室溫孵育5分鐘可以增加產量。
3)用另外的50-200μl Buffer GE或滅菌水再次洗脫可以增加產量。
4)如果要提高DNA的終濃度,可以將步驟9所得的DNA洗脫液重新加至吸附膜上,重復步驟9;若洗脫體積小于200μl,可以增加DNA的終濃度,但可能會減少總產量。如果DNA的量小于1μg,推薦用50μl Buffer GE或滅菌水洗脫。
5)因為保存在水中的DNA會受到酸性水解作用的影響,如需長期保存,推薦用Buffer GE洗脫并于-20℃保存。
儲存條件:室溫(15~30℃)。
根據(jù)您的關注的
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貨號
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名稱:菌體內毒素清除劑
貨號:BTN90901
規(guī)格:200mL
內毒素是E.coli細胞壁的主要成分,傳統(tǒng)的去除內毒素的方法是將內毒素和DNA一起純化出來,然后再用各種方法去除其中的內毒素,操作繁瑣,DNA 回收率低。本產品可以直接把E.coli 表面的內毒素去除,從根本上避免了內毒素對后續(xù)操作(如質粒DNA提取,重組蛋白質提取)的污染。
產品特點:
1. 個在菌體收集階段去除內毒素的產品,從源頭上避免了內毒素跟DNA和胞漿蛋白的接觸,從根本上防止了可能產生的污染。
2. 操作簡單快速,用酶溶液溫和清洗菌體3-4次即可去掉細菌表面的內毒素,只需要10分鐘左右時間,不需要復雜儀器設備。
3.,能去除99%以上的內毒素。
4.跟各種質粒DNA提取、基因組DNA提取和蛋白質提取等操作兼容,DNA丟失率只有10%左右(其他方法DNA 丟失率可以高達50%)。
5. 不影響DNA和大部分蛋白質的活性,處理過的質粒DNA可用于轉染實驗。
6. 既可小規(guī)模使用(在1.5mL離心管內),也可放量用于大規(guī)模無內毒素質粒DNA提取和無內毒素蛋白質純化。
儲存條件:常溫運輸和保存,有效期一年。
使用方法:
一:用于菌液小于3mL的樣品
1. 收集1.5-3mL E.coli 飽和菌液,12000rpm離心1分鐘,棄上清,得到細菌沉淀。
2. 加入1mL 本產品溫和混勻后10,000-12000rpm離心1分鐘,棄上清(含內毒素)。
3. 再重復上述操作3-4次,得到的菌體可以直接進入后續(xù)的無內毒素質粒DNA提取或無內毒素蛋白質提取程序。
二:用于菌液多于3mL的樣品
整個操作同上,只是在15或50mL塑料離心管中進行,離心速度不能超過離心管的承受力,本產品的用量按比例增加。
疑難解答:
Q:為何用常規(guī)的方法很難去除生物樣品中的內毒素?
A:因為內毒素帶電性跟DNA和部分蛋白質相同,所以基于帶電性的分離方法(如硅膠膜吸附,離子交換吸附)不能將它們分開;同時內毒素又是雙性分子(類似于細胞膜的磷脂分子),能夠形成大小不等的聚合物,跟質粒DNA和蛋白質大小接近,所以基于分子量大小的分離方法(如凝膠排阻過濾和氯化銫超速離心)也不能將其有效分離。

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