SYA065 小腸結腸炎耶爾森菌單重熒光PCR
- 產品/服務：SYA065 小腸結腸炎耶爾森菌單重熒光PCR
- 型 號：SYA065
- 品 牌：百奧萊博
- 單 價：面議
- 更新日期：2023-06-06
- 有效期至：長期有效
- 瀏覽次數：1015
產品簡介
小腸結腸炎耶爾森菌單重熒光PCR由專業試劑供應商北京百奧萊博提供，僅用于生物化學研究方面，我公司專注于細菌PCR檢測試劑盒產品的研發、生產和供應，為您提供的小腸結腸炎耶爾森菌單重熒光PCR質量可靠，批間差小，且價格公道，熱切盼望您選購我們的產品。...
產品詳細介紹
特別提示：包括小腸結腸炎耶爾森菌單重熒光PCR檢測試劑盒在內，本公司的所有產品僅可用于科研實驗，嚴禁用于臨床醫療及其他非科研用途！
產品名稱：小腸結腸炎耶爾森菌單重熒光PCR檢測試劑盒
產品貨號：SYA065
產品規格：48次/盒
根據您的關注的小腸結腸炎耶爾森菌單重熒光PCR檢測試劑盒，您可能還對以下產品有需求：
名稱：單增李斯特氏菌單重熒光PCR檢測試劑盒
貨號：SYA004
規格：48次/盒
本試劑盒適用于增菌培養物、疑似病料及食品中單增李斯特氏菌(Lm)的檢測，其檢測結果僅供參考。
本試劑盒用一對單增李斯特氏菌特異性引物，結合一條特異性熒光探針，用一步法熒光PCR技術對單增李斯特氏菌DNA進行體外擴增檢測，用于臨床上對可疑感染
者的病原學診斷。本試劑盒中單增李斯特氏菌的探針報告基團為FAM。
試劑盒組成：
| 組份 | 數量 | 規格 |
| 單增李斯特氏菌熒光qPCR反應液(Lm-qPCR MIX) |
1 管 | 720μL/管 |
| DNA抽提液(DNA Extraction) | 2管 | 1.5mL/管 |
| 陰性對照(NTC) | 1管 | 50μL/管 |
| 陽性對照(Lm-PTC) |
1管 | 50μL/管 |
儲存條件：-20℃，有效期6個月。
使用方法：
一、樣品采集：
?食品樣品：樣品的采集與預培養按照《食品安家標準食品微生物學檢驗單核細胞增生李斯特氏菌檢驗》(GB 4789.30-2010)要求進行。
?糞便樣品：取糞便置于滅菌的收集管中送檢。
?病灶部位樣品：取發病部位新鮮滲出物、粘液膿血送檢。
注：上述樣品建議經過增菌后，收集培養物用于檢測。
二、DNA提取：
可采用PCR試劑盒配備的DNA抽提液，按以下說明進行DNA核酸的粗提。也可采購北京百奧萊博科技有限公司生產的DNA提取試劑盒(過柱法-熒光配套)或其他合適的
商業化產品，并按照相應試劑盒說明進行操作。
?液體培養物：取液體培養物100μL加到1.5mL無菌離心管中，8000rpm離心3min，盡量吸棄上清，加入50μL DNA抽提液充分混勻，100℃恒溫10min，13000rpm
離心3min，取上清5μL進行PCR反應。
?固體培養物：挑取單克隆菌落與50μL DNA抽提液充分混勻，100℃恒溫10min，13000rpm離心3min，取上清5μL進行PCR反應。
?糞便樣品：挑取米粒大小糞便于滅菌離心管中，加入0.5mL生理鹽水，振蕩混勻，13000rpm離心3分鐘，棄上清，沉淀中加入50μL DNA抽提液充分混勻，100℃
恒溫10min，13000rpm離心3min取上清5μL進行PCR反應。
?其他液體標本：取標本2-3mL，13000rpm離心3min，棄上清，沉淀中加入50μL DNA抽提液充分混勻，100℃恒溫10min，13000rpm離心3min取上清5μL進行PCR
反應。
注：建議采用相關標準方法進行前增菌，并按照6.2.1方法進行提取。陽性對照和陰性對照為已經抽提好的核酸(無需提取)，直接取5μL加入到反應體系中即可。
由于陽性對照濃度較高，建議zuì后在樣品制備區域加入陽性對照。
三、檢測步驟：
1．試劑的準備
從試劑盒中取出熒光PCR反應液(Lm-qPCR MIX)，室溫融化并振蕩混勻后，10000rpm離心10s。
設所需要的PCR反應管管數為N(N=樣本數+1管陰性對照+1管陽性對照)，每個測試反應體系配制如下表：
| 試劑 | 每個反應加入的量 | N個反應加入的量 |
|
熒光PCR反應液 | 15μL | N×15μL |
計算好各試劑的使用量，加入一適當體積潔凈離心管中，充分混勻，10000rpm離心10s，向設定的N個PCR反應管中分別加入15μL，向每管中加入處理后樣品/陰
性對照(NTC)/陽性對照(Lm-PTC)5μL，10000rpm瞬時離心10秒。
2．qPCR反應條件
將各反應管放入實時熒光PCR儀器的反應槽內。推薦循環條件：
| 1循環 | 50℃ for 2 min | |
|
預變性 | 1循環 | 95℃ for 10 min |
| PCR擴增 | 40循環 |
95℃ for 15 sec 60℃ for 60 sec |
在60℃延伸時收集熒光信號。報告基團：設置為FAM，淬滅基團：NONE，請勿選擇ROX參比熒光。
四、結果分析：
1．結果分析條件設定
直接讀取檢測結果。基線和閾值設定原則根據儀器噪聲情況進行調整，以閾值線剛好超過正常陰性樣品擴增曲線的zuì高點為準。
2．試驗成立判定
?陰性對照(NTC)：不應產生任何的擴增曲線。
?陽性對照(Lm-PTC)：均產生擴增曲線，且Ct值≤30。
?以上條件應同時滿足，否則，此次試驗視為無效。
3．結果判定
?在試驗成立的條件下，Ct值≤30的樣本為陽性，表明Lm核酸陽性。
?Ct值顯示為無的樣本為陰性樣本，表明Lm核酸陰性。
?如果30＜Ct值≤35，判為可疑樣品。對于可疑樣品，先看擴增曲線。如果擴增曲線為對數擴增曲線，則為可疑陽性，否則判為陰性。
?對于可疑陽性樣品，重新抽提核酸，再次進行Lm qPCR檢測。如果重復擴增曲線為對數擴增曲線，則判為樣本陽性，表明Lm核酸陽性；否則判為樣本陰性。
五、注意事項：
?初次使用前請仔細閱讀說明書。并嚴格按照說明書步驟操作。
?所有使用的離心管應高壓滅菌，而且必須不含DNA酶。
?PCR操作應嚴格按照要求分區(試劑配制區、標本處理區、PCR擴增區等)，防止實驗室污染。
?樣本提取、試劑配置、加樣需在不同區的超凈工作臺進行，以免污染。
?試劑盒里所有物品應視為污染物對待，并按照衛生部《微生物生物醫學實驗室生物安全通則》進行處理。
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